Cydia nigricana

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Tortrice dei piselli
Cydia nigricana
Stato di conservazione
Specie non valutata[1]
Classificazione scientifica
DominioEukaryota
RegnoAnimalia
SottoregnoEumetazoa
SuperphylumProtostomia
PhylumArthropoda
SubphylumTracheata
SuperclasseHexapoda
ClasseInsecta
SottoclassePterygota
CoorteEndopterygota
SuperordineOligoneoptera
SezionePanorpoidea
OrdineLepidoptera
SottordineGlossata
InfraordineHeteroneura
DivisioneDitrysia
SuperfamigliaTortricoidea
FamigliaTortricidae
SottofamigliaOlethreutinae
TribùGrapholitini
GenereCydia
SpecieC. nigricana
Nomenclatura binomiale
Cydia nigricana
(Fabricius, 1794)
Sinonimi

Vedi testo

La tortrice dei piselli (Cydia nigricana (Fabricius, 1794))[2] è un lepidottero appartenente alla famiglia Tortricidae, diffuso in Eurasia e introdotto in Nordamerica.[3][4][5]

Etimologia

L'epiteto specifico deriva dall'aggettivo latino nĭgra (nera, scura) e da cāna (bianca, argentea).[6]

Descrizione

Adulto

L'ala anteriore, che mostra un colore di fondo brunastro oppure tendente all'olivaceo, presenta una forma allungata, con un rapporto tra lunghezza e larghezza pari a circa 2:1. Il margine costale rivela una serie di striature gialline trasversali che iniziano dal terzo centrale e proseguono fin quasi all'apice, con lunghezza via via crescente; nel margine costale sono appena visibili anche lievissime iridescenze plumbee. L'ocello è di regola poco evidente e spesso costituito da tre-cinque brevi striature nere.[3][7]

L'ala posteriore ha una colorazione affine a quella dell'anteriore, ma con una tonalità via via più chiara nella regione basale. È presente una frangia color crema per tutta la lunghezza del margine esterno, in netto risalto rispetto alla colorazione del resto dell'ala. Nel maschio si osserva una tasca dorsale lungo il margine interno, fin quasi al tornus. È pure presente una linea scura nella zona basale.[3][7][8]

Le antenne sono filiformi, nerastre e lunghe circa la metà del margine costale.[7] Presentano sei tipi differenti di sensilli, con differenti strutture e funzioni, distribuiti in maniera differente nei due sessi.[9] I palpi labiali sono bianco-grigiastri.[7]

Il torace ha una colorazione bruno-nerastra, particolarmente scura nella zona delle tegulae.[7]

L'addome è lievemente più chiaro rispetto al torace, soprattutto lungo i fianchi.[7]

Nell'apparato genitale maschile, il tegumen è alquanto smussato apicalmente. Il margine ventrale della valva mostra una leggera scanalatura e un piccolo rilievo glabro a monte del cucullus; quest'ultimo appare ampio e dotato di setole sulla superficie ventrale.[7]

Nel genitale femminile, il settimo sternite presenta scanalature più o meno parallele. Il ductus bursae rivela un breve tratto sclerificato. Lo sterigma appare alquanto stretto e allungato, con un processo a sezione triangolare sito posteriormente.[7]

L'apertura alare è compresa tra 12 e 16 mm.[7]

Uovo

Le uova sono semitrasparenti all'atto della deposizione, per poi diventare subito bianco-giallastre. Hanno forma lenticolare, con dimensioni 0,7 x 0,5 mm. Dopo uno o due giorni diventano più scure e si nota la presenza di due bande vitelline di colore rosso o rosato, che scompaiono poco prima della schiusa, verso il sesto giorno, quando il profilo della larva è osservabile in trasparenza attraverso il corion.[3][7]

Larva

A completa maturazione la larva raggiunge i 13–15 mm. La colorazione è bianco-giallastra, con capo marroncino; le mandibole e gli ocelli sono nerastri; il protorace ed i tergiti anali grigio-nerastri e irregolarmente pigmentati; l'addome appare bianco-giallastro, talvolta con riflessi verdognoli. Le zampe sono biancastre.[3][7]

Pupa

La crisalide è brunastra e lunga circa 8 mm; mostra una doppia fila di spine sulla superficie dorsale di ogni urite, tranne sugli ultimi tre, in cui le spine sono singole.[3][7]

Biologia

Ciclo vitale

Le uova sono deposte singolarmente o a gruppi di due o tre, di regola sulla pagina inferiore delle foglie, sulle stipole oppure sui sepali o ancora sul baccello in formazione.[3][7][10]

Dopo la schiusa, i piccoli bruchi iniziano ad attaccare immediatamente i baccelli in formazione, per un periodo che giunge fino a poco più di tre settimane dalla fioritura. Nelle fasi iniziali, queste larve assumono un comportamento molto aggressivo, sfruttando l'una i passaggi scavati dall'altra, ed aggredendosi a vicenda; Tuttavia, una volta penetrate, ciascuna tollera le altre. A seguito di questo comportamento, di regola è possibile osservare solo una larva per ogni baccello, che provoca il danneggiamento di due o tre semi. A maturazione completa, dopo 20-30 giorni, la larva di quinta età, che rappresenta la fase svernante, riemerge dal baccello e si sposta sul terreno, ritirandosi poi in uno spesso bozzolo di 1 cm, costituito da fibre sericee e detrito (hibernaculum), posizionato a 1–8 cm di profondità; all'interno di questa struttura ha inizio la diapausa. Si è osservato che prima di procedere all'impupamento, il bruco esce dal proprio riparo e riemerge in superficie. Solo pochissime larve possono invece affrontare una diapausa più prolungata, di due anni, che viene definita superpausa. Nel caso in cui la pianta nutrice appartenga al genere Lens (lenticchia), il bozzolo può essere formato all'interno del baccello.[3][7][10]

Gli adulti sono fortemente attratti dalla fioritura dei piselli, anche da oltre 2 km di distanza. Una temperatura di 17-18 °C può essere considerata il limite termico per l'accoppiamento[3][7]

Periodo di volo

La specie è univoltina. Nella parte più meridionale dell'areale, gli adulti sfarfallano tra maggio e giugno, mentre a latitudini più elevate si possono osservare tra giugno e agosto, o comunque in concomitanza con la fioritura delle piante di pisello.[3][8][11][12][13]

Alimentazione

I bruchi si accrescono su un ristretto numero di piante ospiti appartenenti essenzialmente alla famiglia Fabaceae, con la sola eccezione di Pinus strobiformis:[3][14]

Parassitoidismo

Tra gli Hymenoptera sono stati segnalati i seguenti parassitoidi, appartenenti a due superfamiglie:[3][7][15]

  • Superfamiglia Chalcidoidea Latreille, 1817
  • Superfamiglia Ichneumonoidea Latreille, 1802
    • Famiglia Braconidae Nees, 1811
      • Apanteles Forster, 1862
        • Apanteles lineipes (Wesmael, 1837)
        • Apanteles sicarius Marshall, 1885
      • Ascogaster Wesmael, 1835
        • Ascogaster quadridentata Wesmael, 1835
      • Bracon Fabricius, 1804
        • Bracon claripennis Thomson, 1892
        • Bracon piger (Wesmael, 1838)
      • Chelonus Panzer, 1806
        • Chelonus contractus (Nees, 1816)
      • Lytopylus Forster, 1862
        • Lytopylus rufipes (Nees, 1812)
      • Macrocentrus Curtis, 1833
        • Macrocentrus ancylivora Rohwer, 1923
        • Macrocentrus thoracicus (Nees, 1811)
      • Phanerotoma Wesmael, 1838
        • Phanerotoma fasciata Provancher, 1881
    • Famiglia Ichneumonidae Latreille, 1802
      • Agrothereutes Forster, 1850
        • Agrothereutes rufopectus Cushman, 1927
      • Bathythrix Forster, 1869
        • Bathythrix spheginus (Gravenhorst, 1829)
      • Campoplex Gravenhorst, 1829
      • Diadegma Forster, 1869
        • Diadegma consumtor (Gravenhorst, 1829)
        • Diadegma contractum (Brischke, 1880)
      • Exochus Gravenhorst, 1829
        • Exochus morionellus Holmgren, 1858
      • Glypta Gravenhorst, 1829
        • Glypta haesitator Gravenhorst, 1829
        • Glypta rufiscutellaris Cresson, 1870
        • Glypta scalaris Gravenhorst, 1829
      • Mastrus Forster, 1869
        • Mastrus ridibundus (Gravenhorst, 1829)
        • Mastrus rufulus (Thomson, 1884)
      • Mesoleius Holmgren, 1856
        • Mesoleius tenthredinis Morley, 1912
      • Pimpla Fabricius, 1804
      • Pristomerus Curtis, 1836
        • Pristomerus vulnerator (Panzer, 1799)
      • Scambus Hartig, 1838
        • Scambus brevicornis (Gravenhorst, 1829)
        • Scambus inanis (Schrank, 1802)
        • Scambus signatus (Pfeffer, 1913)
      • Triclistus Forster, 1869
        • Triclistus podagricus (Gravenhorst, 1829)

Incidenza

Le larve danneggiano di preferenza il pisello, ma provocano anche ingenti danni alla lenticchia, nella misura di 4-5 quintali per ettaro.[3][16] Si è osservato che le più colpite sono le cultivar tardive, rispetto a quelle precoci, poiché, soprattutto alle latitudini più settentrionali, vi è una sovrapposizione tra il picco nel periodo di volo e la fioritura.[3][11][12][13][17]

Lotta

La lotta si esegue con metodi di lotta integrata e guidata. Il monitoraggio del numero di adulti viene effettuato per mezzo di trappole che utilizzano il feromone sessuale (E, E-8, 10-dodecenilacetato), e qualora si raggiunga la soglia di intervento, è possibile effettuare trattamenti chimici direttamente sulle uova, ad esempio tramite dimetoato. Discreti risultati si ottengono anche con la distruzione dei residui di coltivazione.[3]

Distribuzione e habitat

L'ecozona olartica

Inizialmente diffusa in Eurasia, questa specie è in seguito giunta anche in America Settentrionale, tanto che la sua distribuzione si può definire di tipo olartico.[3][7][18]

Il suo areale comprende:[3][5][7]

Tassonomia

Sinonimi

Sono stati riportati i seguenti sinonimi:[4][5][19]

  • Cydia rusticella (Clerck, 1759) [nom. rej., opinion 1528 dell'ICZN][20] - Icon. Insect. Rar. tav. 10, fig. 11 - locus typicus: non indicato (già sinonimo eterotipico)[21]
  • Enarmonia dandana Kearfott, 1907 - Trans. Amer. ent. Soc. 33: 65 - locus typicus: Essex County Park, New Jersey, Stati Uniti d'America (sinonimo eterotipico)[22]
  • Enarmonia ratifera Meyrick, 1912 - Ent. mon. mag. 48: 34 - locus typicus: non indicato (sinonimo eterotipico)[23]
  • Endopisa pisana Guénée, 1845 - Ann. Soc. ent. Fr.: 182 - locus typicus: Francia centrale (sinonimo eterotipico)[24]
  • Endopisa tenebriosana Guénée, 1845 [nom. nud.] - Ann. Soc. ent. Fr.: 182 - locus typicus: Germania (sinonimo eterotipico)[24]
  • Endopisa viciana Guénée, 1845 - Ann. Soc. ent. Fr.: 182 - locus typicus: Francia centrale (sinonimo eterotipico)[24]
  • Grapholita nigricana (Fabricius, 1794) - Treitschke, Schmett. Eur. - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[25]
  • Laspeyresia dandana (Kearfott, 1907) - Forbes, Lep. New York: 393 - locus typicus: non indicato (sinonimo eterotipico)[26]
  • Laspeyresia nigricana (Fabricius, 1794) - Fluke, Wisconsin Agric. Exp. Stn. Bull. 1920 (310) - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[27]
  • Laspeyresia novimundi Heinrich, 1920 - Canad. Ent. 52: 257 - locus typicus: Sturgeon Bay, Wisconsin (sinonimo eterotipico)[28]
  • Phalaena rusticella Clerck, 1759 [nom. rej., opinion 1528 dell'ICZN][20] - Icon. Insect. Rar. tav. 10, fig. 11 - locus typicus: non indicato (già sinonimo eterotipico)[21]
  • Pseudotomia nigricana (Fabricius, 1794) - Stephens, Nom. Brit. Ins.: 47 - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[29]
  • Pyralis nigricana Fabricius, 1794 - Ent. Syst. 3, 276 - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico, basionimo)[2]
  • Semasia nigricana (Fabricius, 1794) - Fletcher, Ontario, Exp. Farms Rpt., 1897: 194 - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[30]
  • Tortrix nigricana (Fabricius, 1794) - Haworth, Lep. Brit. (3): 458 - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[31]
  • Tortrix proximana Haworth, 1811 - Lep. Brit (3): 458 - locus typicus: non indicato (sinonimo omotipico)[31]

Sottospecie

Non sono state individuate sottospecie.[4][5]

Galleria d'immagini

  • Adulto
    Adulto
  • Adulto
    Adulto

Conservazione

Lo stato di conservazione della specie non è stato ancora valutato dalla Lista rossa IUCN.[1]

Note

  1. ^ a b The IUCN Red List of Threatened Species, su iucnredlist.org. URL consultato il 19 febbraio 2016.
  2. ^ a b (LA) Fabricius, J. C., Entomologia systematica emendata et aucta: Secundun classes, ordines, genera, species, adjectis synonimis, locis, observationibus, descriptionibus, vol. 3, Hafniae, Impensis Christ. Gottl. Proft., 1794, p. 276, DOI:10.5962/bhl.title.36532, ISBN 978-1173555153, OCLC 22444770.
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  4. ^ a b c (EN) Savela, M., Cydia nigricana, su Funet. URL consultato il 19 febbraio 2016.
  5. ^ a b c d (EN) Taxon details: Cydia nigricana, in Fauna Europaea version 2.6.2, Fauna Europaea Web Service, 2013. URL consultato il 19 febbraio 2016.
  6. ^ Castiglioni, L. & Mariotti, S., IL - Vocabolario della lingua latina, Brambilla, A. & Campagna, G., 30ª ristampa, Torino, Loescher, 1983 [1966], p. 2493, ISBN 978-8820166571, LCCN 76485030, OCLC 848632390.
  7. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r (EN) L. Meijerman & S. A. Ulenberg, Cydia nigricana, su Eurasian Tortricidae. URL consultato il 19 febbraio 2016 (archiviato dall'url originale l'11 marzo 2016).
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  15. ^ (EN) Cydia nigricana, su Home of Ichneumonoidea. URL consultato il 19 febbraio 2016 (archiviato dall'url originale il 2 marzo 2016).
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  20. ^ a b (EN) ICZN, Opinion 1528, in The Bulletin of zoological nomenclature, vol. 46, n. 1, Londra, International Trust for Zoological Nomenclature, 29 marzo 1989, p. 70, ISSN 0007-5167 (WC · ACNP), LCCN 52031665, OCLC 1753468. URL consultato il 19 febbraio 2016.
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  28. ^ (EN) Heinrich, C., The pea moth a new species, in The Canadian entomologist, vol. 52, n. 9, London, Ontario, University of Toronto, novembre 1920, p. 257, ISSN 0008-347X (WC · ACNP), LCCN agr38000066, OCLC 1553087. URL consultato il 19 febbraio 2016.
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Bibliografia

Pubblicazioni

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Collegamenti esterni

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